ZUT - Polska Rama Kwalifikacji / Rok 2023/2024 / Wydział Kształtowania Środowiska i Rolnictwa / Ogrodnictwo (S1) / Rośliny i surowce zielarskie / Sylabus przedmiotu

Wydział Kształtowania Środowiska i Rolnictwa - Ogrodnictwo (S1)
specjalność: Rośliny i surowce zielarskie

Sylabus przedmiotu Rozmnażanie roślin w kulturach in vitro:

Informacje podstawowe

Kierunek studiów	Ogrodnictwo
Forma studiów	studia stacjonarne	Poziom	pierwszego stopnia
Tytuł zawodowy absolwenta	inżynier
Obszary studiów	charakterystyki PRK, kompetencje inżynierskie PRK
Profil	ogólnoakademicki
Moduł	—
Przedmiot	Rozmnażanie roślin w kulturach in vitro
Specjalność	przedmiot wspólny
Jednostka prowadząca	Katedra Genetyki, Hodowli i Biotechnologii Roślin
Nauczyciel odpowiedzialny	Danuta Kulpa <Danuta.Kulpa@zut.edu.pl>
Inni nauczyciele
ECTS (planowane)	2,0	ECTS (formy)	2,0
Forma zaliczenia	zaliczenie	Język	polski
Blok obieralny	—	Grupa obieralna	—

Formy dydaktyczne

Forma dydaktyczna	KOD	Semestr	Godziny	ECTS	Waga	Zaliczenie
laboratoria	L	5	15	1,0	0,30	zaliczenie
wykłady	W	5	15	1,0	0,70	zaliczenie

Wymagania wstępne

KOD	Wymaganie wstępne
W-1	Student powinien wykazać się znajomością fizjologii roślin, przebiegu morfogenezy, działania roślinnych regulatorów wzrostu. Powinien znać metody rozmnażania generatywnego i wegetatywnego oraz hodowli twórczej nowych gatunków roślin.

Cele przedmiotu

KOD	Cel modułu/przedmiotu
C-1	Opanowanie zakresu wiedzy teoretycznej i praktycznej, pozwalającej na założenie i optymalizację danego rodzaju kultury in vitro zgodnie z jej celem.
C-2	Nabycie umiejętności przygotowywania podłoży wzrostowych do prowadzenia kultur in vitro. Poznanie zasad dobierania skaładu podłoży dla danego etapu rozmnażania i gatunku rośliny.
C-3	Nabycie umiejętności zakładania i prowadzenia sterylnych kultur roślinnych oraz adaptacji roślin ex vitro do warunków szklarniowych
C-4	Nabycie umiejętności właściwej oceny wpływu czynników zewnętrznych na rozwój roślin w kulturach in vitro i wyciagania na ich podstawie prawidłowych wniosków wraz z jednoczesną umiejętnością ich prezetacji w formie pisemnej i ustnej.

Treści programowe z podziałem na formy zajęć

KOD	Treść programowa	Godziny
laboratoria
T-L-1	Sporządzanie pożywek i roztworów macierzystych (rola makro – i mikroelementów stosowanych w pożywkach, zasady sporządzania pożywek).	3
T-L-2	Samodzielne namnażanie pędów wybranej rośliny ogrodniczej – praca zespołowa	3
T-L-3	Samodzielne namnażanie roslin cebulowych i kłączowych.	3
T-L-4	Adaptacja roślin do warunków in vivo. Obserwacje sterylności założonych kultur, ocena wpływu zastosowanych czynników (skład mineralny pożywki, regulatory wzrostu, eksplantat) na efektywność namnażania i ukorzeniania	3
T-L-5	Podsumowanie ćwiczeń, prezentacje studentów.	3
		15
wykłady
T-W-1	Roślinne kultury in vitro: zarys historii badań, obecne osiągnięcia oraz wykorzystanie w nauce i praktyce. Przegląd kultur in vitro.	2
T-W-2	Główne etapy mikrorozmnażania. Czynniki oddziaływujące na poszczególne stadia mikropropagacji.	2
T-W-3	Roślinne regulatory wzrostu stosowane w kulturach in vitro i ich wpływ na rozwój roślin.	2
T-W-4	Problemy związane z zakażeniami w kulturach in vitro. Uwalnianie roślin od wirusów i patogenów metodą kultur merystemów wierzchołkowych.	2
T-W-5	Proces somatycznej embriogenezy w kulturach in vitro. Tworzenie i wykorzystanie sztucznych nasion.	2
T-W-6	Kultury organów generatywnych, zarodków i zalązków. Metody prowadzenia kultur protoplastów i warunki tranfromacji roślin w kulturach in vitro.	2
T-W-7	Wykorzystanie kultur in vitro w biosyntezie wtórnych metabolitów. Metody prowadzenie kultur kalusowych w bioreaktorach.	2
T-W-8	Przechowywanie materiału genetycznego w kulturach in vitro	1
		15

Obciążenie pracą studenta - formy aktywności

KOD	Forma aktywności	Godziny
laboratoria
A-L-1	Uczestnictwo w zajęciach	15
A-L-2	Podsumowanie wyników doświadczeń przeprowadzonych na zajęciach. Przygotowanie sprawozdań w postaci pisemnej i prezentacji multimedialnych.	6
A-L-3	Samodzielne czytanie zaleconych publikacji i przygotowanie do zaliczenia.	2
A-L-4	Konsultacje	2
		25
wykłady
A-W-1	uczestnictwo w zajęciach	15
A-W-2	konsultacje	2
A-W-3	samodzielne przygotowanie do zaliczenia.	8
		25

Metody nauczania / narzędzia dydaktyczne

KOD	Metoda nauczania / narzędzie dydaktyczne
M-1	wykład informacyjny wspomagany technikami multimedialnymi
M-2	Ćwiczenia laboratoryjne, nauczanie umiejętności praktycznych.
M-3	Praca projektowa - przygotowanie projektu laboratorium wraz z jego wyposażeniem i oceną możliwości produkcyjnych.
M-4	Przygotowanie prezentacji multimedialnej przez studentów dotyczacejwyników doświadczeń przeprowadzonych w trakcie ćwiczeń laboratoryjnych.

Sposoby oceny

KOD	Sposób oceny
S-1	Ocena formująca: ocena przygotowanego projektu laboratorium
S-2	Ocena podsumowująca: ocena przygotowanej prezentacji multimedialnej
S-3	Ocena podsumowująca: Ocena publikacji podsumowujacych wyniki badań przeprowadzonych w trakcie zajęć.
S-4	Ocena podsumowująca: Zaliczenie końcowe - pisemne

Zamierzone efekty uczenia się - wiedza

Zamierzone efekty uczenia się	Odniesienie do efektów kształcenia dla kierunku studiów	Odniesienie do efektów zdefiniowanych dla obszaru kształcenia	Odniesienie do efektów uczenia się prowadzących do uzyskania tytułu zawodowego inżyniera	Cel przedmiotu	Treści programowe	Metody nauczania	Sposób oceny
OG_1A_C17_W01 Posiada wiedzę z zakresu biochemicznych i fizjologicznych podstaw rozmnażania roślin w kulturach in vitro.	OG_1A_W06	—	—	C-1	T-W-3, T-W-1, T-W-7, T-W-8, T-W-5, T-W-2, T-W-4, T-W-6	M-1	S-1

Zamierzone efekty uczenia się - umiejętności

Zamierzone efekty uczenia się	Odniesienie do efektów kształcenia dla kierunku studiów	Odniesienie do efektów zdefiniowanych dla obszaru kształcenia	Odniesienie do efektów uczenia się prowadzących do uzyskania tytułu zawodowego inżyniera	Cel przedmiotu	Treści programowe	Metody nauczania	Sposób oceny
OG_1A_C17_U01 Potrafi korzytając z wskazówek nauczyciela przygotować różnorodne podłoża wzrostowe oraz zakładać i prowadzić akseniczne kultury in vitro	OG_1A_U08	—	—	C-2, C-3	T-L-4, T-L-1, T-L-2	M-2	S-2
OG_1A_C17_U02 Student posiada umiejętność dobrania odpowiedniego podłoża wzrostowage do danego gatunku roślin i ich fazy rozwoju.	OG_1A_U06	—	—	C-2, C-3, C-4	T-L-4, T-L-1, T-L-2, T-L-3, T-L-5	M-2, M-4	S-2, S-3

Zamierzone efekty uczenia się - inne kompetencje społeczne i personalne

Zamierzone efekty uczenia się	Odniesienie do efektów kształcenia dla kierunku studiów	Odniesienie do efektów zdefiniowanych dla obszaru kształcenia	Odniesienie do efektów uczenia się prowadzących do uzyskania tytułu zawodowego inżyniera	Cel przedmiotu	Treści programowe	Metody nauczania	Sposób oceny
OG_1A_C17_K01 Potrafi pracować w zespole namnażającym rośliny w laboratorium kultur in vitro	OG_1A_K05	—	—	C-1, C-4	T-L-4, T-L-1, T-L-2, T-L-3, T-L-5	M-2, M-3, M-4	S-3
OG_1A_C17_K02 Student zna zasady przechowywania substancji toksycznych w laboratorium oraz ma świadomość ich wpływu na środowisko naturalne.	OG_1A_K04	—	—	C-1	T-L-4, T-L-1, T-L-2	M-1	S-4

Kryterium oceny - wiedza

Efekt uczenia się	Ocena	Kryterium oceny
OG_1A_C17_W01 Posiada wiedzę z zakresu biochemicznych i fizjologicznych podstaw rozmnażania roślin w kulturach in vitro.	2,0	niezadowalająca wiedza
	3,0	zadowalająca wiedza, ale z licznymi błędami
	3,5	zadowalająca wiedza, ale ze znacznymi niedociągnięciami
	4,0	dobra wiedza
	4,5	bardzo dobra wiedza
	5,0	znakomita wiedza

Kryterium oceny - umiejętności

Efekt uczenia się	Ocena	Kryterium oceny
OG_1A_C17_U01 Potrafi korzytając z wskazówek nauczyciela przygotować różnorodne podłoża wzrostowe oraz zakładać i prowadzić akseniczne kultury in vitro	2,0	Student nie potrafi w przygotować podłoży wzrostowych, ani założyć sterylnych kultur.
	3,0	Student potrafi pod kierunkiem nauczyciela przygotować podłoża, korzytając z gotowych zestawów. Zna zasady zakładania sterylnych kultur, ale popełnia bardzo liczne błędy i większość kultur ulega zakażeniu.
	3,5	Student potrafi samodzielnie przygotować podłoża, korzytając z gotowych zestawów. Zna zasady zakładania sterylnych kultur, ale popełnia bardzo liczne błędy i większość kultur ulega zakażeniu.
	4,0	Student potrafi pod kierunkiem nauczyciela przygotować podłoża, korzystając z podstawowych odczynników. Popełnia nieliczne błędy przy zakładaniu kultur - conajmniej 50% kultur jest sterylnych.
	4,5	Student potrafi samodzielnie przygotować podłoża, korzystając z podstawowych odczynników. Niemal nie popełnia blędów przy zakładaniu kultur - conajmniej 80% kultur jest sterylnych.
	5,0	Student potrafi samodzielnie przygotować podłoża, korzystając z podstawowych odczynników, samodzielnie wylicza zawartości substancji w pozywce, potrafi dobrać skład podłoża do etapu wzrostu i gatunku rośliny. Nie popełnia blędów przy zakładaniu kultur - wszystkie są sterylne.
OG_1A_C17_U02 Student posiada umiejętność dobrania odpowiedniego podłoża wzrostowage do danego gatunku roślin i ich fazy rozwoju.	2,0	Student nie zna składów podłoży wzrostowych ani wymagań żywieniowych roślin.
	3,0	Student zna podstawowe wymagania najpopularniejszych roślin w odniesieniu do ich żywienia na poszczególnych etapach kultur in vitro.
	3,5	Student zna wymagania roślin w odniesieniu do ich żywienia na poszczególnych etapach kultur in vitro. Potrafi dobrać skład pożywek minerlnych bazując na wcześniej stosowanych pożywkach.
	4,0	Student zna podstawowe wymagania rzadkich roślin w odniesieniu do ich żywienia na poszczególnych etapach kultur in vitro. Jest w stanie dobrać niestandarodowe pozyki do ich namnażania.
	4,5	Student potrafi analizować osiągniete efakty, zaplanować doświadczenia i dyskutować o osiągniętych wynikach oraz oszacować błędy.
	5,0	Student potrafi efektywnie prezentować, analizować, dyskutować o osiągniętych wynikach, a także proponować modyfikacje w stosowanych wczesniej pożywkach.

Kryterium oceny - inne kompetencje społeczne i personalne

Efekt uczenia się	Ocena	Kryterium oceny
OG_1A_C17_K01 Potrafi pracować w zespole namnażającym rośliny w laboratorium kultur in vitro	2,0	Student nie potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro.
	3,0	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako bierny wykonawca poleceń, popełnia liczne błędy.
	3,5	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako bierny wykonawca poleceń, popełnia nieliczne błędy.
	4,0	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako członek zespołu, wykazuje inicjactywę w zakresie powierzonych mu obowiązków, ale nie potrafi kierować pracą jako przywódca zespołu.
	4,5	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako zarówno jako członek zespołu jak również jego przywódca.
	5,0	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako zarówno jako członek zespołu jak również jego przywódca. Potrafi w sposób doskonały kierować pracą kolegów i rozwiązywać powstające konflikty.
OG_1A_C17_K02 Student zna zasady przechowywania substancji toksycznych w laboratorium oraz ma świadomość ich wpływu na środowisko naturalne.	2,0	Student nie rozumie potrzeby właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro.
	3,0	Student w stopniu ograniczonym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro.
	3,5	Student w stopniu ogroaniczonym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro, ale zna ich wpływ na środowisko naturalne.
	4,0	Student w stopniu dobrym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro. Nie zna zasad prowadzenia dokumentacji
	4,5	Student w stopniu dobrym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro. Jest w stanie pod nadzorem prowadzić dokumentację z tym związaną.
	5,0	Student w stopniu bardzo dobrym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro. Jest w stanie samodzielnie prowadzić dokumentację z tym związaną.

Literatura podstawowa

M. Zenkteler., Hodowla komórek i tkanek roślinnych., PWN, W-wa, 1981
Zenkteler M. (red.), Hodowla komórek i tkanek roślinnych., PWN, Warszawa, 1984, I
red. S. Malepszy., Biotechnologia roślin., PWN, W-wa, 2007
Malepszy S. (red.), Biotechnologia roślin., PWN, Warszawa, 2009, II

Literatura dodatkowa

Stokłosowa E., Hodowla komórek i tkanek., PWN, W-wa, 2008
Bhojwani S,.S., Razdan M.N., Plant tissue culture: Theory and practice., Elsevier, Amsterdam, 1990, I

Treści programowe - laboratoria

KOD	Treść programowa	Godziny
T-L-1	Sporządzanie pożywek i roztworów macierzystych (rola makro – i mikroelementów stosowanych w pożywkach, zasady sporządzania pożywek).	3
T-L-2	Samodzielne namnażanie pędów wybranej rośliny ogrodniczej – praca zespołowa	3
T-L-3	Samodzielne namnażanie roslin cebulowych i kłączowych.	3
T-L-4	Adaptacja roślin do warunków in vivo. Obserwacje sterylności założonych kultur, ocena wpływu zastosowanych czynników (skład mineralny pożywki, regulatory wzrostu, eksplantat) na efektywność namnażania i ukorzeniania	3
T-L-5	Podsumowanie ćwiczeń, prezentacje studentów.	3
		15

Treści programowe - wykłady

KOD	Treść programowa	Godziny
T-W-1	Roślinne kultury in vitro: zarys historii badań, obecne osiągnięcia oraz wykorzystanie w nauce i praktyce. Przegląd kultur in vitro.	2
T-W-2	Główne etapy mikrorozmnażania. Czynniki oddziaływujące na poszczególne stadia mikropropagacji.	2
T-W-3	Roślinne regulatory wzrostu stosowane w kulturach in vitro i ich wpływ na rozwój roślin.	2
T-W-4	Problemy związane z zakażeniami w kulturach in vitro. Uwalnianie roślin od wirusów i patogenów metodą kultur merystemów wierzchołkowych.	2
T-W-5	Proces somatycznej embriogenezy w kulturach in vitro. Tworzenie i wykorzystanie sztucznych nasion.	2
T-W-6	Kultury organów generatywnych, zarodków i zalązków. Metody prowadzenia kultur protoplastów i warunki tranfromacji roślin w kulturach in vitro.	2
T-W-7	Wykorzystanie kultur in vitro w biosyntezie wtórnych metabolitów. Metody prowadzenie kultur kalusowych w bioreaktorach.	2
T-W-8	Przechowywanie materiału genetycznego w kulturach in vitro	1
		15

Formy aktywności - laboratoria

KOD	Forma aktywności	Godziny
A-L-1	Uczestnictwo w zajęciach	15
A-L-2	Podsumowanie wyników doświadczeń przeprowadzonych na zajęciach. Przygotowanie sprawozdań w postaci pisemnej i prezentacji multimedialnych.	6
A-L-3	Samodzielne czytanie zaleconych publikacji i przygotowanie do zaliczenia.	2
A-L-4	Konsultacje	2
		25

(*) 1 punkt ECTS, odpowiada około 30 godzinom aktywności studenta

Formy aktywności - wykłady

KOD	Forma aktywności	Godziny
A-W-1	uczestnictwo w zajęciach	15
A-W-2	konsultacje	2
A-W-3	samodzielne przygotowanie do zaliczenia.	8
		25

(*) 1 punkt ECTS, odpowiada około 30 godzinom aktywności studenta

Pole	KOD	Znaczenie kodu
Zamierzone efekty uczenia się	OG_1A_C17_W01	Posiada wiedzę z zakresu biochemicznych i fizjologicznych podstaw rozmnażania roślin w kulturach in vitro.
Odniesienie do efektów kształcenia dla kierunku studiów	OG_1A_W06	student ma wiedzę z zakresu genetyki i biotechnologii, w tym mechanizmów genetycznych zachodzących na poziomie komórki, organizmu i populacji, zna ogólne zasady hodowli i biotechnologii roślin
Cel przedmiotu	C-1	Opanowanie zakresu wiedzy teoretycznej i praktycznej, pozwalającej na założenie i optymalizację danego rodzaju kultury in vitro zgodnie z jej celem.
Treści programowe	T-W-3	Roślinne regulatory wzrostu stosowane w kulturach in vitro i ich wpływ na rozwój roślin.
	T-W-1	Roślinne kultury in vitro: zarys historii badań, obecne osiągnięcia oraz wykorzystanie w nauce i praktyce. Przegląd kultur in vitro.
	T-W-7	Wykorzystanie kultur in vitro w biosyntezie wtórnych metabolitów. Metody prowadzenie kultur kalusowych w bioreaktorach.
	T-W-8	Przechowywanie materiału genetycznego w kulturach in vitro
	T-W-5	Proces somatycznej embriogenezy w kulturach in vitro. Tworzenie i wykorzystanie sztucznych nasion.
	T-W-2	Główne etapy mikrorozmnażania. Czynniki oddziaływujące na poszczególne stadia mikropropagacji.
	T-W-4	Problemy związane z zakażeniami w kulturach in vitro. Uwalnianie roślin od wirusów i patogenów metodą kultur merystemów wierzchołkowych.
	T-W-6	Kultury organów generatywnych, zarodków i zalązków. Metody prowadzenia kultur protoplastów i warunki tranfromacji roślin w kulturach in vitro.
Metody nauczania	M-1	wykład informacyjny wspomagany technikami multimedialnymi
Sposób oceny	S-1	Ocena formująca: ocena przygotowanego projektu laboratorium
Kryteria oceny	Ocena	Kryterium oceny
	2,0	niezadowalająca wiedza
	3,0	zadowalająca wiedza, ale z licznymi błędami
	3,5	zadowalająca wiedza, ale ze znacznymi niedociągnięciami
	4,0	dobra wiedza
	4,5	bardzo dobra wiedza
	5,0	znakomita wiedza

Pole	KOD	Znaczenie kodu
Zamierzone efekty uczenia się	OG_1A_C17_U01	Potrafi korzytając z wskazówek nauczyciela przygotować różnorodne podłoża wzrostowe oraz zakładać i prowadzić akseniczne kultury in vitro
Odniesienie do efektów kształcenia dla kierunku studiów	OG_1A_U08	student wykonuje pod kierunkiem opiekuna naukowego proste zadanie badawcze lub projektowe dotyczące szeroko rozumianego ogrodnictwa, prawidłowo interpretuje rezultaty i wyciąga wnioski
Cel przedmiotu	C-2	Nabycie umiejętności przygotowywania podłoży wzrostowych do prowadzenia kultur in vitro. Poznanie zasad dobierania skaładu podłoży dla danego etapu rozmnażania i gatunku rośliny.
Cel przedmiotu	C-3	Nabycie umiejętności zakładania i prowadzenia sterylnych kultur roślinnych oraz adaptacji roślin ex vitro do warunków szklarniowych
Treści programowe	T-L-4	Adaptacja roślin do warunków in vivo. Obserwacje sterylności założonych kultur, ocena wpływu zastosowanych czynników (skład mineralny pożywki, regulatory wzrostu, eksplantat) na efektywność namnażania i ukorzeniania
	T-L-1	Sporządzanie pożywek i roztworów macierzystych (rola makro – i mikroelementów stosowanych w pożywkach, zasady sporządzania pożywek).
	T-L-2	Samodzielne namnażanie pędów wybranej rośliny ogrodniczej – praca zespołowa
Metody nauczania	M-2	Ćwiczenia laboratoryjne, nauczanie umiejętności praktycznych.
Sposób oceny	S-2	Ocena podsumowująca: ocena przygotowanej prezentacji multimedialnej
Kryteria oceny	Ocena	Kryterium oceny
	2,0	Student nie potrafi w przygotować podłoży wzrostowych, ani założyć sterylnych kultur.
	3,0	Student potrafi pod kierunkiem nauczyciela przygotować podłoża, korzytając z gotowych zestawów. Zna zasady zakładania sterylnych kultur, ale popełnia bardzo liczne błędy i większość kultur ulega zakażeniu.
	3,5	Student potrafi samodzielnie przygotować podłoża, korzytając z gotowych zestawów. Zna zasady zakładania sterylnych kultur, ale popełnia bardzo liczne błędy i większość kultur ulega zakażeniu.
	4,0	Student potrafi pod kierunkiem nauczyciela przygotować podłoża, korzystając z podstawowych odczynników. Popełnia nieliczne błędy przy zakładaniu kultur - conajmniej 50% kultur jest sterylnych.
	4,5	Student potrafi samodzielnie przygotować podłoża, korzystając z podstawowych odczynników. Niemal nie popełnia blędów przy zakładaniu kultur - conajmniej 80% kultur jest sterylnych.
	5,0	Student potrafi samodzielnie przygotować podłoża, korzystając z podstawowych odczynników, samodzielnie wylicza zawartości substancji w pozywce, potrafi dobrać skład podłoża do etapu wzrostu i gatunku rośliny. Nie popełnia blędów przy zakładaniu kultur - wszystkie są sterylne.

Pole	KOD	Znaczenie kodu
Zamierzone efekty uczenia się	OG_1A_C17_U02	Student posiada umiejętność dobrania odpowiedniego podłoża wzrostowage do danego gatunku roślin i ich fazy rozwoju.
Odniesienie do efektów kształcenia dla kierunku studiów	OG_1A_U06	student ma umiejętność wyboru oraz zaplanowania technologii uprawy, przechowywania i przetwarzania, stosowanych w ogrodnictwie w celu uzyskania najlepszych efektów produkcyjnych ze szczególnym uwzględnieniem jakości produktu finalnego oraz analizy ekonomicznej przedsięwzięcia
Cel przedmiotu	C-2	Nabycie umiejętności przygotowywania podłoży wzrostowych do prowadzenia kultur in vitro. Poznanie zasad dobierania skaładu podłoży dla danego etapu rozmnażania i gatunku rośliny.
	C-3	Nabycie umiejętności zakładania i prowadzenia sterylnych kultur roślinnych oraz adaptacji roślin ex vitro do warunków szklarniowych
	C-4	Nabycie umiejętności właściwej oceny wpływu czynników zewnętrznych na rozwój roślin w kulturach in vitro i wyciagania na ich podstawie prawidłowych wniosków wraz z jednoczesną umiejętnością ich prezetacji w formie pisemnej i ustnej.
Treści programowe	T-L-4	Adaptacja roślin do warunków in vivo. Obserwacje sterylności założonych kultur, ocena wpływu zastosowanych czynników (skład mineralny pożywki, regulatory wzrostu, eksplantat) na efektywność namnażania i ukorzeniania
	T-L-1	Sporządzanie pożywek i roztworów macierzystych (rola makro – i mikroelementów stosowanych w pożywkach, zasady sporządzania pożywek).
	T-L-2	Samodzielne namnażanie pędów wybranej rośliny ogrodniczej – praca zespołowa
	T-L-3	Samodzielne namnażanie roslin cebulowych i kłączowych.
	T-L-5	Podsumowanie ćwiczeń, prezentacje studentów.
Metody nauczania	M-2	Ćwiczenia laboratoryjne, nauczanie umiejętności praktycznych.
Metody nauczania	M-4	Przygotowanie prezentacji multimedialnej przez studentów dotyczacejwyników doświadczeń przeprowadzonych w trakcie ćwiczeń laboratoryjnych.
Sposób oceny	S-2	Ocena podsumowująca: ocena przygotowanej prezentacji multimedialnej
Sposób oceny	S-3	Ocena podsumowująca: Ocena publikacji podsumowujacych wyniki badań przeprowadzonych w trakcie zajęć.
Kryteria oceny	Ocena	Kryterium oceny
	2,0	Student nie zna składów podłoży wzrostowych ani wymagań żywieniowych roślin.
	3,0	Student zna podstawowe wymagania najpopularniejszych roślin w odniesieniu do ich żywienia na poszczególnych etapach kultur in vitro.
	3,5	Student zna wymagania roślin w odniesieniu do ich żywienia na poszczególnych etapach kultur in vitro. Potrafi dobrać skład pożywek minerlnych bazując na wcześniej stosowanych pożywkach.
	4,0	Student zna podstawowe wymagania rzadkich roślin w odniesieniu do ich żywienia na poszczególnych etapach kultur in vitro. Jest w stanie dobrać niestandarodowe pozyki do ich namnażania.
	4,5	Student potrafi analizować osiągniete efakty, zaplanować doświadczenia i dyskutować o osiągniętych wynikach oraz oszacować błędy.
	5,0	Student potrafi efektywnie prezentować, analizować, dyskutować o osiągniętych wynikach, a także proponować modyfikacje w stosowanych wczesniej pożywkach.

Pole	KOD	Znaczenie kodu
Zamierzone efekty uczenia się	OG_1A_C17_K01	Potrafi pracować w zespole namnażającym rośliny w laboratorium kultur in vitro
Odniesienie do efektów kształcenia dla kierunku studiów	OG_1A_K05	student potrafi pracować w zespole w charakterze osoby odpowiedzialnej za końcowy wynik pracy oraz jako wykonawca części powierzonego zadania
Cel przedmiotu	C-1	Opanowanie zakresu wiedzy teoretycznej i praktycznej, pozwalającej na założenie i optymalizację danego rodzaju kultury in vitro zgodnie z jej celem.
Cel przedmiotu	C-4	Nabycie umiejętności właściwej oceny wpływu czynników zewnętrznych na rozwój roślin w kulturach in vitro i wyciagania na ich podstawie prawidłowych wniosków wraz z jednoczesną umiejętnością ich prezetacji w formie pisemnej i ustnej.
Treści programowe	T-L-4	Adaptacja roślin do warunków in vivo. Obserwacje sterylności założonych kultur, ocena wpływu zastosowanych czynników (skład mineralny pożywki, regulatory wzrostu, eksplantat) na efektywność namnażania i ukorzeniania
	T-L-1	Sporządzanie pożywek i roztworów macierzystych (rola makro – i mikroelementów stosowanych w pożywkach, zasady sporządzania pożywek).
	T-L-2	Samodzielne namnażanie pędów wybranej rośliny ogrodniczej – praca zespołowa
	T-L-3	Samodzielne namnażanie roslin cebulowych i kłączowych.
	T-L-5	Podsumowanie ćwiczeń, prezentacje studentów.
Metody nauczania	M-2	Ćwiczenia laboratoryjne, nauczanie umiejętności praktycznych.
	M-3	Praca projektowa - przygotowanie projektu laboratorium wraz z jego wyposażeniem i oceną możliwości produkcyjnych.
	M-4	Przygotowanie prezentacji multimedialnej przez studentów dotyczacejwyników doświadczeń przeprowadzonych w trakcie ćwiczeń laboratoryjnych.
Sposób oceny	S-3	Ocena podsumowująca: Ocena publikacji podsumowujacych wyniki badań przeprowadzonych w trakcie zajęć.
Kryteria oceny	Ocena	Kryterium oceny
	2,0	Student nie potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro.
	3,0	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako bierny wykonawca poleceń, popełnia liczne błędy.
	3,5	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako bierny wykonawca poleceń, popełnia nieliczne błędy.
	4,0	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako członek zespołu, wykazuje inicjactywę w zakresie powierzonych mu obowiązków, ale nie potrafi kierować pracą jako przywódca zespołu.
	4,5	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako zarówno jako członek zespołu jak również jego przywódca.
	5,0	Student potrafi porozumieć się z grupą i pracować w zespole osób prowadzących namnażanie roślin w kulturach in vitro jako zarówno jako członek zespołu jak również jego przywódca. Potrafi w sposób doskonały kierować pracą kolegów i rozwiązywać powstające konflikty.

Pole	KOD	Znaczenie kodu
Zamierzone efekty uczenia się	OG_1A_C17_K02	Student zna zasady przechowywania substancji toksycznych w laboratorium oraz ma świadomość ich wpływu na środowisko naturalne.
Odniesienie do efektów kształcenia dla kierunku studiów	OG_1A_K04	student ma świadomość ryzyka i potrafi ocenić skutki społeczne wykonywanej działalności w zakresie szeroko rozumianego ogrodnictwa z uwzględnieniem jego wpływu na środowisko, a także odpowiedzialności za podejmowane decyzje
Cel przedmiotu	C-1	Opanowanie zakresu wiedzy teoretycznej i praktycznej, pozwalającej na założenie i optymalizację danego rodzaju kultury in vitro zgodnie z jej celem.
Treści programowe	T-L-4	Adaptacja roślin do warunków in vivo. Obserwacje sterylności założonych kultur, ocena wpływu zastosowanych czynników (skład mineralny pożywki, regulatory wzrostu, eksplantat) na efektywność namnażania i ukorzeniania
	T-L-1	Sporządzanie pożywek i roztworów macierzystych (rola makro – i mikroelementów stosowanych w pożywkach, zasady sporządzania pożywek).
	T-L-2	Samodzielne namnażanie pędów wybranej rośliny ogrodniczej – praca zespołowa
Metody nauczania	M-1	wykład informacyjny wspomagany technikami multimedialnymi
Sposób oceny	S-4	Ocena podsumowująca: Zaliczenie końcowe - pisemne
Kryteria oceny	Ocena	Kryterium oceny
	2,0	Student nie rozumie potrzeby właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro.
	3,0	Student w stopniu ograniczonym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro.
	3,5	Student w stopniu ogroaniczonym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro, ale zna ich wpływ na środowisko naturalne.
	4,0	Student w stopniu dobrym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro. Nie zna zasad prowadzenia dokumentacji
	4,5	Student w stopniu dobrym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro. Jest w stanie pod nadzorem prowadzić dokumentację z tym związaną.
	5,0	Student w stopniu bardzo dobrym rozumie potrzebę właściwego przechowywania i transpotrowania środków toksycznych stosowanych w laboratorium kultur in vitro. Jest w stanie samodzielnie prowadzić dokumentację z tym związaną.